實驗步驟: 樣品制備
1. 組織樣品:破碎組織,加入適量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制劑Cocktail),低溫勻漿或置于冰上超聲裂解樣品,靜置30 min。 2. 貼壁細胞樣品:吸去培養(yǎng)基, 將細胞轉移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗細胞 2 遍。加入適量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制劑Cocktail),超聲破碎,冰上靜置裂解 30 min。冰上靜置裂解 5 min。 3. 懸浮細胞樣品:將培養(yǎng)基轉移至離心管中離心,棄上清,用冰冷的 PBS 清洗細胞 2 遍。加入適量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制劑Cocktail),冰上靜置裂解 5 min。 4. 將所得勻漿液/裂解液置于離心機中 4°C 離心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液測定蛋白質濃度;
6. 加入蛋白上樣緩沖液,將 20 µL樣品在 95~100°C加熱 5 min,冰上靜置冷卻后離心 5 min。
電泳分離
2. 電源調 80 V, 30 min。然后電源調 110 V~150 V,觀察 Marker,待蛋白所在的預染蛋白 Marker 指示帶得到合適的分離后,即可停止電泳。(注意電泳時電流切勿過大,如超過 150 mA 會導致溫度上升,容易影響跑膠結果。如無法避免采用大電流,可對電泳槽使用冰浴降溫。)
轉膜
1.拿出電轉槽,把夾子和耗材浸泡在預冷電轉液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用轉移緩沖液沖洗;
3.按照“夾子黑邊-海綿-濾紙-濾紙-膠-PVDF膜-濾紙-濾紙-海綿-夾子白邊”的順序安裝好; 濕轉法參考條件:200 mA, 120 min。
(注意電轉條件可根據蛋白大小適當調節(jié),分子量大的蛋白適宜采用大電流,并延長轉膜時間,但需要確保電轉槽始終處于低溫的環(huán)境中,避免凝膠融化。)
封閉
1. 電轉移后,室溫下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封閉液中將膜孵育 1 h,室溫;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
抗體孵育 1. 用 一抗稀釋液配制一抗工作液(建議一抗稀釋比 1:5000),4°C 條件下與膜輕柔搖晃孵育過夜; 2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封閉液中加入二抗,室溫條件下與膜輕柔搖晃孵育 1 h;
4. 孵育結束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
顯色
1. 加入配制好的 ECL 發(fā)光底物(或根據二抗選擇其他顯色基質)混合均勻;
2. 與膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜濕潤),置于顯影儀中進行曝光。
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