實(shí)驗(yàn)步驟: 樣品制備
1. 組織樣品:破碎組織,加入適量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制劑Cocktail, 磷酸酶抑制劑Cocktail),低溫勻漿或置于冰上超聲裂解樣品,靜置30 min。 2. 貼壁細(xì)胞樣品:吸去培養(yǎng)基, 將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗細(xì)胞 2 遍。加入適量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制劑Cocktail, 磷酸酶抑制劑Cocktail),超聲破碎,冰上靜置裂解 30 min。冰上靜置裂解 5 min。 3. 懸浮細(xì)胞樣品:將培養(yǎng)基轉(zhuǎn)移至離心管中離心,棄上清,用冰冷的 PBS 清洗細(xì)胞 2 遍。加入適量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制劑Cocktail, 磷酸酶抑制劑Cocktail),冰上靜置裂解 5 min。 4. 將所得勻漿液/裂解液置于離心機(jī)中 4°C 離心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液測(cè)定蛋白質(zhì)濃度;
6. 加入蛋白上樣緩沖液,將 20 µL樣品在 95~100°C加熱 5 min,冰上靜置冷卻后離心 5 min。
電泳分離
2. 電源調(diào) 80 V, 30 min。然后電源調(diào) 110 V~150 V,觀察 Marker,待蛋白所在的預(yù)染蛋白 Marker 指示帶得到合適的分離后,即可停止電泳。(注意電泳時(shí)電流切勿過(guò)大,如超過(guò) 150 mA 會(huì)導(dǎo)致溫度上升,容易影響跑膠結(jié)果。如無(wú)法避免采用大電流,可對(duì)電泳槽使用冰浴降溫。)
轉(zhuǎn)膜
1.拿出電轉(zhuǎn)槽,把夾子和耗材浸泡在預(yù)冷電轉(zhuǎn)液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用轉(zhuǎn)移緩沖液沖洗;
3.按照“夾子黑邊-海綿-濾紙-濾紙-膠-PVDF膜-濾紙-濾紙-海綿-夾子白邊”的順序安裝好; 濕轉(zhuǎn)法參考條件:200 mA, 120 min。
(注意電轉(zhuǎn)條件可根據(jù)蛋白大小適當(dāng)調(diào)節(jié),分子量大的蛋白適宜采用大電流,并延長(zhǎng)轉(zhuǎn)膜時(shí)間,但需要確保電轉(zhuǎn)槽始終處于低溫的環(huán)境中,避免凝膠融化。)
封閉
1. 電轉(zhuǎn)移后,室溫下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封閉液(建議使用 5% BSA溶液)中將膜孵育 1 h,室溫;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
抗體孵育 1. 用 一抗稀釋液配制一抗工作液(建議一抗稀釋比 1:1000),4°C 條件下與膜輕柔搖晃孵育過(guò)夜; 2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封閉液中加入二抗,室溫條件下與膜輕柔搖晃孵育 1 h;
4. 孵育結(jié)束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
顯色
1. 加入配制好的 ECL 發(fā)光底物(或根據(jù)二抗選擇其他顯色基質(zhì))混合均勻;
2. 與膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜濕潤(rùn)),置于顯影儀中進(jìn)行曝光。
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